Зоны замера бактерицидной облученности в камерах
В. В. Трегуб, врач-ординатор, Л. А. Георгиева врач-ординатор, В. П. Сливка, к. м. н., НМУ им. Пирогова, г. Винница
В настоящее время в большинстве лечебно-профилактических учреждений стран СНГ хранение стерильного материала и инструментов проводится на стерильных столах согласно приказу № 720 от 31.01.1978 г. Стерильный стол состоит из четырех слоев стерильной ткани, покрывающей стерильный инструмент. Время хранения ограничено шестью часами, после чего весь хранимый инструмент подлежит повторной стерилизации.
Современные работы в области микробиологии, санитарии, дезинфектологии позволяют сделать вывод, что данная методика хранения является несовершенной, устаревшей и даже опасной в плане вторичного инфицирования инструмента в процессе хранения на столах с тканевым покрытием.
Эти выводы основаны на работах и исследованиях по вопросу переноса патогенных возбудителей различных инфекций воздушно-капельным путем.
Известно, что в воздухе помещений лечебных учреждений присутствует обширная патогенная микрофлора Staph. aureus, albus, Streptococcus pyogenes, Proteus vulgaris, Bact. tuberculosis, различные виды вирусных инфекций, вегетативные и спороносные формы, образующих понятие внутрибольничной инфекции. Смешиваясь с микрочастицами пыли, они образуют аэрозольную взвесь в воздухе, так называемый «патогенный аэропланктон» (Я. Э. Нейштадт), способный долгое время находится во взвешенном состоянии, создавая угрозу инфицирования стерильного инструмента в процессе его размещения, забора и хранения на стерильных столах.
Количество «патогенного аэропланктона» в воздухе медучреждений зависит от числа медперсонала и больных, находящихся в помещении, где хранится стерильный инструмент. С каждым часом идет накопление числа микроорганизмов, которое может достигать от 2000 до 18 тыс. в 1 м3 (по данным Н. П. Шастина). В этих условиях создается реальная угроза для хранения стерильного инструмента.
Работы В. Г. Юзбашева, Т. В. Васильева НИИ ДМЗ РФ (г. Москва) наглядно демонстрируют, что при обсемененности воздуха помещений 2х3 м в опыте (тест микроорганизмом — золотистым стафилококком, штамм 209) с концентрацией, равной 1500 колоний на 1 м3, при использовании стерильного стола с тканевым покрытием за период от 5 сек. до 5 мин. количество колоний, высеваемых іn vitro на чашках Петри, составило от 2 до 38 (см. таблицу динамики изменения обсемененности тест-объектов на стерильных столах).
| Обсемененность воздуха помещения, КОЕ/м3 | Среднее число КОЕ, осевших на чашке Петри в течение срока наблюдения | |||||
| секунды | минуты | |||||
| 1500 ± 70 | 5 | 10 | 30 | 1 | 3 | 5 |
| колонии | 2 | 4 | 8 | 14 | 22 | 38 |
Понятно, что рабочая многочасовая смена с периодом 6 часов неминуемо приведет к накоплению патогенных возбудителей на хранимых инструментах и сам инструмент явится источником инфекции при применении его по назначению, вызвав различные послеоперационные осложнения с весьма плачевными исходами.
В этих условиях на сегодняшний день актуальным становится способ хранения стерильного инструмента и материалов в камерах, боксах под воздействием непрерывного УФ-излучения.
Бактерицидный эффект УФ-излучения начал широко исследоваться в 20-х годах ХХ века. Наибольшим успехом на сегодняшний день пользуются облучатели — газоразрядные УФ-лампы низкого давления с длинной волны = 253,7 нм. При УФ-облучении воздуха происходит быстрая гибель микроорганизмов за счет повреждения ДНК-структур ядерного аппарата клетки, гибель РНК белков протоплазмы и мембран клеток.
Бактерицидность УФ-излучения обратно пропорциональна квадрату расстояния до объекта облучения, зависит от прозрачности среды, температуры воздуха, длительности облучения. Сопротивляемость различных микроорганизмов УФ-излучению колеблется от малых доз облучения (4,2 мДЖ/см2) — для бактерий и вирусов, до очень больших доз облучения (16,5 мДЖ/см2) для спор и простейших. Так, вегетативные формы гибнут при прямом попадании УФ-излучателя (бактерицидный эффект), а спороносные формы и антракоиды только приостанавливают свой рост («бактериостатический эффект») и гибнут только при прямом контакте с поверхностью УФ-источника. Образующийся при работе УФ-источников озон обладает также слабым бактерицидным эффектом и антагонистическим действием к УФ-излучению.
На сегодняшний день промышленностью стран СНГ освоено несколько типов камер для хранения стерильного инструментария с использованием бактерицидного УФ-источника лампы «Филипс» (Голландия) от 15 до 36 Вт мощности (ресурс 8000 часов).
Принципы устройства отечественных камер одинаковы по сути и различаются использованием материала для корпуса (железо, нержавеющая сталь, пластмасса), устройством расположения крышки, решеток, УФ-источников. Однако обеспечение бактерицидного эффекта в этих камерах происходит неравномерно по полю хранения инструмента. Согласно исследованиям НИИ ДЗРФ (Москва) бактерицидная облученность — ЕБК колеблется от 1 до 8 ед. при исследовании поля облучения в камерах (см. рис.).
|
Зоны замера бактерицидной облученности в камерах |
Кроме того, некоторые камеры имеют крышки, открывающиеся вовнутрь, что приводит к осыпанию пыли и микроорганизмов внутрь стерильного пространства. В камерах после загрузки образуются зоны тени — мертвые зоны под инструментом, куда плохо проникает УФ-излучение, и создается опасность скопления патогенной микрофлоры. УФ-лучи действуют поверхностно и не способны проникать глубоко в образующийся «бактериальный ковер». Корпуса камер из пластмасс в какой то мере проницаемы для УФ-излучения, что не безопасно для окружающего персонала.
Учитывая все вышесказанное, мы попытались создать бокс «Асептик», который имеет гладкие своды, удобные для дезобработки, оригинальную крышку, открывающуюся наружу, удобно расположенную УФ-лампу, имеющую большой угол облучения, быстро заменяемую при необходимости.
 |
Корпус покрыт глянцевой эмалью с большим коэффициентом отражения УФ-лучей, что создает эффект концентрации лучей на хранимом инструменте.
В боксе впервые применен рециркулятор воздуха, создающий внутри перемешивание воздуха из зоны тени с малым облучением в зону жесткого УФ-облучения, что резко усиливает бактерицидность УФ-источника, так как мощность ламп максимальная на своей поверхности и убывает обратно пропорционально квадрату расстояния. Рециркуляция воздуха позволяет добиться равномерности облучения воздуха в боксе и большей гарантии гибели патогенной микрофлоры. Происходит также перемешивание озона, что усиливает бактерицидный эффект бокса. Бокс снабжен электронной защитой, при открывании крышки блокируется УФ-источник. Бокс выпускается в 4 размерных вариантах, на столе-каталке.
Применение камер, боксов УФ-излучения для хранения стерильного инструмента обеспечит исключение вторичного инфицирования его в процессе хранения и использования, резко снизит вероятность послеоперационных гнойно-септических осложнений после хирургического лечения, трудозатраты медучреждений на поддержание стерильности инструмента, что в итоге приведет к повышению качества квалифицированной и специализированной хирургической помощи на современном уровне с использованием достижений науки и техники.
Альтернативы применению УФ-излучения для хранения стерильных инструментов на сегодняшний день нет!
Литература